大鼠血管内皮生长因子定量分析酶联免疫检测试剂盒
本试剂盒仅供科研使用。用于体外定量检测大鼠血清、血浆或细胞培养上清液中的VEGF浓度。使用前请仔细阅读说明书并检查试剂组分是否完整, 本试剂盒仅供科研使用。如有产品包装破损或质量投拆,请在收到货一个月之内联系我们。
VEGF简介:
VEGF属于PDGF因子家族,是A、B、C、D四种亚类的一类因子的总称,它们在血管发生过程中起重要作用。其中在血管再生和内皮细胞的再生过程中,VEGF-A扮演重要的角色。现已发现VEGF-A有许多种因切割后氨基酸数不同的亚型,其中含有的肝磷脂接合区域,能与胞外基质内的肝磷脂结合,以VEGF165量最多。VEGF-A可由多种细胞分泌的分子量为45kDa的糖蛋白。
VEGF的功能主要表现在伤口的愈合和雌性生殖周期循环上。在病理组织中,VEGF能提升血管通透性。这就是肿瘤的转移和肿瘤复发的基础。在胚胎期,VEGF的作用表现为调控胚胎细胞的增殖、转移和提高内皮细胞的存活力上,通过成骨细胞和成软骨细胞的蓦集作用提升骨形成的效率。VEGF-A的功能还表现在一些如血管再生和血管通透相关联的生理过程中。肿瘤释放的细胞因子和生长因子能刺激骨髓中的巨核细胞分裂为血小板,这样就间接增加了VEGF-A向肿瘤的迁移。骨组织、心肌、肝实质、成骨细胞、中性粒细胞、巨噬细胞、角化细胞、棕色脂肪组织、CD34+干细胞、内皮细胞、成纤维细胞和血管平滑肌细胞等细胞和组织均可表达 VEGF。
检测原理:
本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法检测样本中大鼠VEGF的浓度。大鼠VEGF捕获抗体已预包被于酶标板上,当加入标本或参考品时,其中的大鼠VEGF会与捕获抗体结合,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。当加入生物素化的抗大鼠VEGF抗体后,抗大鼠VEGF抗体与大鼠VEGF接合,形成夹心的免疫复合物,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。随后加入辣根过氧化物酶标记的亲合素。生物素与亲合素特异性结合,亲合素连接的酶就会与夹心的免疫复合物连接起来;其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。最后加入显色剂,若样本中存在VEGF将会形成免疫复合物,辣根过氧化物酶会催化无色的显色剂氧化成蓝色物质,在加入终止液后呈黄色。通过酶标仪检测,读其450nm处的OD值,大鼠VEGF浓度与OD450值之间呈正比,通过参考品绘制标准曲线,对照未知样本中OD值,即可算出标本中VEGF浓度。
大鼠VEGF定量分析酶联免疫检测试剂盒组成:
组分 | 规格(96T/48T) |
大鼠VEGF预包被板 | 12条/6条 |
样本分析缓冲液 | 5ml/3ml |
标准品稀释液 | 10ml/5ml |
大鼠VEGF标准品 | 4支/2支(冻干)* |
大鼠VEGF生物素化抗体 | 10ml/5ml |
亲和素连接的HRP酶 | 10ml/5ml |
浓缩洗涤液 20× | 30ml/15ml |
TMB底物 | 10ml/5ml |
中止液 | 5ml/3ml |
封板胶纸 | 3/2张 |
说明书 | 1份 |
标本收集:
1.标本的收集请按下列流程进行操作;
A.细胞上清标本离心去除悬浮物后即可;
B.血清标本应是自然凝固后,取上清,避免在冰箱中凝固血液;
C.血浆标本,推荐用EDTA的方法收集;
D.若待测样本不能及时检测,标本收集后请分装,冻存于-20℃,避免反复冻融。
2.血清标本不应添加任何防腐剂或抗凝剂;
3.标本应清澈透明,检测前样本中如有悬浮物应通过离心去除。
4.请勿使用溶血,高血脂或污染的标本检测,否则结果将不准确。
注:大鼠血清或血浆样本请用样本分析缓冲液做倍比稀释后再检测。
注意事项:
1.试剂盒请保存在2~8℃。
2.浓缩洗涤液因在低温下可能有结晶,请水浴加热使结晶完全溶解后再配制工作液。
3.标准品复溶加样后,剩余部份请丢弃。
4.底物请勿接触氧化剂和金属。
5.加样时,请及时更换枪头,避免交叉污染。
6.严禁混用不同批号的试剂盒组份。
7.充分混匀对保证反应结果的准性很重要,在加液后请轻轻叩击边缘以保证混匀。
8.室温反应,请严格控制在25~28℃。
9.洗涤过程是至关重要的,洗涤不充分会使精确度下降并导致结果误差较大。
10.试验中标准品和样本检测时建议作双复孔。
11.加样过程中避免气泡的产生。
12.血清和血浆标本的检测时,检测抗体的孵育时间应适当延长。
检测前准备工作:
1.试剂盒自冰箱中取出后应置室温(25~28℃)平衡20分钟;每次检测后剩余试剂请及时于2~8℃保存。
2.将浓缩洗涤液用双蒸水或去离子水稀释(1份加19份水)。
3.如有5X准品稀释液,请按所需量用双蒸水或去离子水稀释(1份加4水)。
4.标准品: 按标签复溶体积加入标准品稀释液复溶使VEGF终浓度达到1000pg/ml,室温反应,请严格控制在25~28℃,静置10~15分钟后轻轻混悬(建议抽吸几次)待彻底溶解,用标准品稀释液倍比梯度稀释后依次加入检测孔中。(标准曲线取七个点,最高浓度为1000pg/ml,标准品稀释液直接加入作为0浓度.)
洗涤方法:
自动洗板机或人工洗板:每孔洗涤液为300ul,注入与吸出间隔15-30秒。洗板5次。最后一次洗板完成后将板倒扣着在厚吸水纸上用力拍干。
实验过程需自备的材料:
1.不同规格的加样枪及相应的枪头;
2.酶标仪;
3.自动洗板机;
4.去离子水或双蒸水;
操作步骤:
1.通过计算并确定一次性实验所需的板条数,取出所需板条放置在框架内,暂时用不到板条请放回铝箔袋密封,保存于4℃。
2.建议设置本底较正孔,即空白孔,设置方法为该孔只加TMB显色液和中止液。每次实验均需做标准品对照并画出标准曲线。
3.分别将标本或不同浓度标准品(100ul/孔)加入相应孔中,用封板胶纸封住反应孔,室温(25~28℃)孵育120分钟。对于血清或血浆标本,请加入50 ul样本分析缓冲液后加50 ul标本,如稀释量大,请将样本与样本分析缓冲液等量加入,不足部分用标准品稀释液补充至100ul。
4.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。
5.加入生物素化抗体工作液(100ul/孔)。用封板胶纸封住反应孔,室温(25~28℃)孵育60分钟。
6.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。
7.加入亲和素链接的HRP酶工作液(100ul/孔)。用封板胶纸封住反应孔,避光室温(25~28℃)孵育20分钟。
8.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。
9.加入显色剂TMB100ul/孔,避光室温(25~28℃)孵育20分钟。
10.加入终止液50ul/孔,混匀后即刻测量OD450值。
结果判断:
1.复孔的值在20%的差异范围内结果才有效,复孔的值平均后可作为测量值。
2.每个标准品或标本的OD值应减去本底校正孔的OD值。
3.手工绘制标准曲线。以标准品浓度作横坐标,OD值作纵坐标,以平滑线连接各标准品的坐标点。通过标本的OD值可在标准曲线上查出其浓度。
4.若标本OD值高于标准曲线上限,应适当稀释后重测,计算浓度时应乘以稀释倍数。
典型数值和参考曲线
浓度pg/ml | 典型OD值1 | 典型OD值2 | OD平均值 |
0 | 0.1084 | 0.1264 | 0.1174 |
31.25 | 0.0217 | 0.3663 | 0.194 |
62.5 | 0.1987 | 0.4507 | 0.3247 |
125 | 0.8126 | 0.49002 | 0.65131 |
250 | 1.1253 | 0.8931 | 1.0092 |
500 | 1.2861 | 1.5371 | 1.4116 |
1000 | 2.1955 | 1.9975 | 2.0965 |
大鼠VEGF参考标准曲线
注意:本图仅供参考,应以同次试验标准品所绘标准曲线计算标本含量。
灵敏度,特异性和重复性:
1.灵敏度:多次重复结果表明,最小检出量为14pg/ml。
2.特异性:与GDNF, GM-CSF,TNF-α,IL-1α,IL-1β,IL-2 ,IL-4 ,PDGF-BB, IL-10,人 VEGF,小鼠VEGF
等没有交叉反应。
3.重复性:板内,板间变异系数均<10%.
参考文献:
1. Clauss, M. (2000) Semin. Thromb. Hemost. 26:561.
2. Shibuya, M. (2001) Cell Struct. Funct. 26:25.
3. Woolard, J. et al. (2004) Cancer Res. 64:7822.
4. Yamane, A. et al. (1994) Oncogene 9:2683.
5. Namiki, A. et al. (1995) J. Biol. Chem. 270:31189.
6. Fuh, G. et al. (2000) J. Biol. Chem. 275:26690.
货号 | 产品名称 | 规格 | 价格 | 指令 |
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